在小白鼠实验中，常常需要将动物麻醉后进行实验操作，这时，实验人员可能就会犯愁，该如何麻醉？麻醉方式如何选？麻醉剂量如何控制？本期为大家分享三种常用的麻醉方式及注意事项，欢迎收藏。

动物麻醉，根据麻醉范围主要分为局部麻醉和全身麻醉，全身麻醉又分为吸入式麻醉和注射式麻醉。

局部麻醉

局部麻醉指通过麻醉药阻断机体某一部分的感觉神经传导功能，而运动神经传导保持完好或同时有程度不等的被阻滞状态。动物在麻醉期间能保持清醒，对重要脏器功能干扰轻微，麻醉并发症少，是一种较安全的麻醉方法。

局麻操作时，将动物固定好，首先在局部皮肤用皮头针先作皮内注射，形成橘皮样丘疹，然后换成局部麻醉长针头，由皮点进针，放射到皮点周围继续注射，直到要求麻醉区域的皮肤都浸润为止，可以根据实验操作要求的深度按照皮下、筋膜、肌肉、腹膜或骨膜的顺序，依次注射麻药，以达到麻醉神经末梢的目的。

吸入式麻醉

吸入麻醉，又称为气麻，是将挥发性或气体麻醉剂，由动物呼吸道吸入体内而产生麻醉效果，起效快，恢复也快，且麻醉的深度和维持时间易控制。大小鼠实验中常用乙醚、异氟烷等麻醉剂来气麻。

1. 乙醚

乙醚为高度易挥发性液体，被吸收后会广泛抑制中枢神经系统，由于起效和维持时间短，主要用于短时间的浅麻实验，如大鼠眼眶取血等简单实验。操作时，将被乙醚浸湿的消毒脱脂棉球或纱布放入烧杯内，将实验动物放入，用塑料薄膜封口观察动物麻醉状态。若实验时间过长，可将动物固定在实验台上，将含有乙醚的棉球靠近其鼻部，保持吸入状态。

2. 异氟烷

异氟烷为无色液体，易挥发，具有轻微气味，它不会影响动物的生理指标，在动物实验中的应用日趋广泛。操作时会配专用的吸入麻醉机，混合纯氧进行麻醉，通过氧气气流使异氟烷挥发。诱导麻醉一般使用2~3%的浓度，维持使用1.5~2%的浓度。

注射式麻醉

注射麻醉常采用肌肉、腹腔、静脉注射，大小鼠实验中常用的麻醉剂有阿佛丁、氯胺酮等。不知道怎么注射，可以参考往期文章：常见6大给药方式细节要记牢。

1.阿佛丁

阿佛丁学名三溴乙醇，曾被推荐作为转基因鼠传代有关的外科手术(如胚胎移植和输精管切除术)的麻醉剂，一般配置浓度为1.2%-2.5%。大小鼠用药量为125~400mg/kg。

2. 氯胺酮

一种镇痛麻醉剂，注射后很快产生麻醉作用，使动物进入浅睡眠状态，麻醉的安全性相对较高，适用于各种表浅、短小手术麻醉及全身复合麻醉，大小鼠用药量为100~150mg/kg。

注意事项

注意给药剂量：配制的药液浓度要适中不可过高，以免麻醉过急造成动物死亡。除参照一般标准外，还应考虑个体对药物的耐受性，而且体重与所需剂量的关系也并不是绝对成正比的。一般说，衰弱和过胖的动物，其单位体重所需剂量较小。

确认动物已完全麻醉：以小鼠为例，麻醉起效时的状态为：小鼠仰卧时心跳及呼吸均匀、肌肉松弛、四肢无活动、无夹趾疼痛反射、胡须无触碰反应、无角膜反射、踏板反射消失，即视为达到完全麻醉状态。手术过程中如果发现动物抽搐、排尿，说明麻醉过深，应立即进行急救。

若小鼠出现复苏迹象：若实验还没有完成，小鼠接近苏醒，需及时将麻醉瓶（气麻）放在动物口、鼻处，给予辅助吸入麻醉或可临时适当补加麻醉剂，一般每次补加剂量不超过注射总量的1/10～1/5。

注意保温：在麻醉状态下，小鼠的体温调节中枢被抑制，不能自行调节体温，小鼠很容易在环境中失温死亡。所以麻醉状态下的小鼠应放在热台上，并在手术结束，小鼠完全苏醒后方可放回笼架。

在进行动物麻醉实验时，要根据实验目的以及疼痛等级选择合适的麻醉方式及联用药物，保障动物福利，提高手术操作安全性，方可获得更稳定可靠的实验数据。